Las bacterias producen una elevada cantidad de ARN no codificante que facilita la digestión de ARN codificante en fragmentos de 20 nucleótidos. Una enzima lleva a cabo este proceso que tiene importantes implicaciones en la regulación de la expresión génica.
El ARN codificante (que se traduce en proteínas) de más del 75% de los genes de la bacteria Staphylococcus aureus presenta regiones de solapamiento con ARN no codificante o con ARN codificante de genes adyacentes, según una investigación del Consejo Superior de Investigaciones Científicas (CSIC).
El trabajo sugiere que este fenómeno, que se produce en todo el genoma, tiene importantes implicaciones en la regulación de la expresión génica de las bacterias.
Durante la transcripción, las cadenas de ADN se traducen en ARN que será codificado en proteínas. “Hemos descubierto que otro tipo de bacterias [las Gram+] también producen una gran cantidad de ARN no codificante que se solapa con su homólogo inverso, el ARN codificante, como las dos hileras de una cremallera”, explica Íñigo Lasa, coautor del artículo e investigador del CSIC.
Cuando la cremallera se cierra, entra en acción la enzima RNase III, que actúa como una tijera y corta la doble cadena de ADN en pequeños fragmentos de 20 nucleótidos. Lasa cree que “este mecanismo podría servir para filtrar parte del ARN codificante que se produce en cantidades insuficientes como para dar lugar a proteínas funcionales”.
Este proceso puede tener varias funciones en la célula. Por un lado, establecería el nivel mínimo que debe alcanzar un ARN para traducirse a proteína. “De este modo, se evitaría que la célula quedase saturada de proteínas que se producen en cantidades insuficientes para llevar a cabo su función”, indica el investigador.
Por otro lado, coordinaría la expresión de genes vecinos cuyas moléculas de ARN también se solapan en muchas ocasiones, evitando que ambos genes se expresen simultáneamente, porque el proceso de digestión sólo permitiría sobrevivir al gen transcrito que se encuentra en mayor cantidad.
Secuenciación de S. aureus
La investigación se ha llevado a cabo gracias a la secuenciación del ARN (transcriptoma) de S. aureus mediante técnicas de secuenciación masiva. Además, el equipo ha descubierto que este mecanismo también tiene lugar en otras bacterias Gram+.
“Nos encontramos frente a un nuevo proceso de regulación conservado en bacterias”, afirma Alejandro Toledo también autor del trabajo e investigador del CSIC.
Toledo cree que el estudio añade una nueva dimensión al control global de la expresión de los genes. “No sería descabellado pensar que las moléculas de ARN pequeñas generadas por la digestión de los ARN solapantes fuesen las precusoras evolutivas de los microARN de las células eucariotas”, añade.
S. aureus reside de manera inocua en la piel del ser humano y un tercio de la población adulta es portador nasal de dicha bacteria. Sin embargo, si consigue atravesar la barrera epitelial y alcanzar los tejidos, se convierte en un patógeno extremadamente versátil, capaz de sobrevivir y producir infecciones en casi todos los tejidos y causar enfermedades tan diversas como neumonía, endocarditis, osteomielitis, bacteriemia y abscesos, además de infectar todo tipo de implantes médicos.
Según Lasa, “el aumento del conocimiento sobre esta bacteria también puede ayudarnos a combatir sus efectos negativos”.
Referencia bibliográfica
Íñigo Lasa, Alejandro Toledo Arana, Alexander Dobin, Maite Villanueva, Igor Ruiz de los Mozos, Marta Vergara Irigaray, Víctor Segura, Delphine Fagegaltier, José R. Penadés, Jaione Valle, Cristina Solano y Thomas R. Gingeras. “Genome wide antisense transcription drives mRNA processing in bacteria”. Proceedings of the National Academy of Sciences. DOI: 10.1073/pnas.1113521108.
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